В последние годы почковые клещи широко распространились на плантациях смородины на территофрии России. На смородине и крыжовнике встречаются несколько видов этих фитофагов.
Почковый галловый клещ Cecidophyopsis ribis Westw. известен как вредитель черной смородины с середины XIX столетия. Он наносит серьезный ущерб этой культуре, приводя ее практически к бесплодию. Клещ также является переносчиком вирусной болезни – реверсии, или махровости, возбудитель которой описан лишь в самом конце ХХ столетия. В результате питания клещей внутри почек последние разрастаются, образуют крупные, округлые галлы. Из таких почек не образуются ни листья, ни цветки, поскольку ткани дегенерируют, генеративные зачатки превращаются в вегетативные, возникают гигантские питательные клетки, преждевременно появляются боковые почки. Как правило, поврежденные почки буреют, засыхают, побеги усиленно ветвятся из-за пробуждения спящих почек, образуя «ведьмины метлы». Если поврежденные листья развиваются, нередко они имеют резко асимметричную, уродливую трехлопастную форму с глубоко врезанными зубчиками. Листья не имеют черешковой ямки, более темно окрашены, их вид можно принять за симптомы вирусной реверсии.
Долгое время красносмородинного галлового почкового клеща Cecidophyopsis selachdon van Eyden, вызывающего похожие симптомы на красной смородине, и крыжовникового почкового негаллообразующего клеща C. grossulariae Cottinge причисляли к расам C. ribis. При этом не учитывалось нетипичное повреждение почек, вызываемое недавно идентифицированным в Финляндии почковым клещом C. spicata [4], повреждающим красную и черную смородину. Крыжовниковый почковый негаллообразующий клещ повреждает почки черной и нескольких видов красной смородины, нами неоднократно обнаруживались повреждения и белой смородины. По нашим наблюдениям, в поврежденных им чешуях почек возникают локальные пузыри диаметром около 100 мкм, окружающие их ткани несколько разбухают, кончики чешуй буреют. Из выживших почек вырастают деформированные побеги, мелкие, с пузырчатыми, затем засыхающими пятнами; листья с энациями на черешках и жилках. При сильном повреждении почек черной смородины морозостойкость кустарников снижается. Микроскопические размеры этих белых червеобразных клещей очень затрудняют определение их видов по морфологическим признакам. Тело клещей кольцеобразно сегментировано, длина не превышает 200 мкм, а ширина 50 мкм, колющесосущий ротовой орган оканчивается клювовидным хоботком, две пары ног на переднем конце и присоски на брюшке. Стекловидные личинки длиной 70–130 мкм, после двух линек они превращаются в нимфы длиной 130–180 мкм. Яйца овальные, перламутровые, стекловидные. Самцы значительно меньше самок, по внешнему виду мало отличаются от них, но встречаются реже. Самки могут размножаться партеногенетически.
Видовые различия клещей можно выявить только с помощью электронного микроскопа, использование которого в практике массовых анализов не реально. Проблему массовой диагностики решило внедрение молекулярных методов на основе ПЦР. Эти же методы позволили после десятилетий неудач описать возбудителя махровости, или реверсии смородины (ранее считалось, что это заболевание имеет фитоплазменный характер). Им оказался вирус Blackcurrant reversion nepovirus (BPV). Затем установили, что он в сочетании с фитоплазмой из группы желтухи астр или рабдовирусом способен вызывать особо вредоносную «русскую» форму реверсии.
В ходе общей фитосанитарной оценки насаждений смородины нами уточнены некоторые особенности биоэкологии почковых клещей в условиях средней полосы России. Была констатирована постоянная встречаемость почкового галлового клеща (заселенность кустов до 100 %, поврежденность от 3–5 до 85 % почек) и реверсия в насаждениях черной смородины 5 областей Нечерноземья. Повсеместный, хотя и неоднородный характер носило повреждение более 120 сортообразцов смородины в коллекционных опытных и сортоиспытательных насаждениях. В частности, из более чем 100 сортообразцов генофонда отдела селекции ВСТИСП повреждения не были выявлены только у сорта Грация селекции ВНИИСПК (хотя в других регионах почковые клещи обнаружены и на этом сорте) при явном поражении реверсией 85 % генофонда.
Купить билогический инстектоакарицид Фитоверм и прочитать инструкцию по применению можно в нашем магазине перейдя в раздел Защита растений
Сходная картина повсеместного повреждения и поражения была отмечена на красной и белой смородине на других плантациях Московской и Кировской областей, особенно в селекционных коллекциях и посадках госсортоучастков. В коллекции отдела селекции ВСТИСП сильно поврежденными почковыми клещами оказались сорта Голландская красная, Голландская розовая, Замок Хаутона, Константиновская, Натали, Рачновская, Ред Лейк, Чулковская. В средней степени были повреждены сорта Задунайская, Йонхер Ван Тетс, Мелодия, Надежда, Ранняя сладкая, Рондом, Серпантин, Уральский сувенир, Фертоди Пирас, Ютеборгская, в слабой степени – Алмазная, Алтайская рубиновая, Каскад, Красная Виксне, Роте Шпетлезе, Хейз.
Реверсией было поражено более 80 % сортообразцов белой и красной смородины с симптомами, аналогичными описанным на черной смородине. Кроме того, на лабораторном участке ВСТИСП на сортах крыжовника Смена и Северный капитан было выявлено повреждение крыжовниковым негаллообразующим почковым клещом.
В ходе изучения типов повреждения почек черной, красной и белой смородины нами были выявлены разные симптомы. Типичные крупные кочанообразные галлы (на красной и белой смородине, локализованные преимущественно в верхней части кроны), более мелкие, колосовидные галловые почки (преимущественно в средней и нижней части кроны черной и красной смородины) и внешне здоровые, но содержащие клещей и нередко погибающие почки.
Крупные галлы на черной и красной смородине вызывают C. ribis и C. selachdon соответственно, а мелкие и нетипичные галлы на этих культурах – C. spicata. «Слепоту» почек крыжовника без галлообразования вызывает C. grossulariae. Следует отметить, что эти виды клещей широко встречаются в сопредельных с Россией европейских странах. Точная идентификация, как уже говорилось, возможна лишь при использовании методов молекулярной диагностики.
В результате анализа нескольких десятков почек черной смородины, расположенных над и под галловыми, нами обнаружено 7,1 и 5,7 % почек, заселенных почковым клещом без проявления внешних симптомов повреждения. Это подтверждает заключение Э.Э. Савздарга [1] о неоправданности рекомендации очень трудоемкого метода выщипывания галловых почек с целью борьбы с галловым черносмородинным почковым клещом.
У почковых клещей зимуют обычно взрослые самки внутри почек. Весной, при температуре 5 °С, они приступают к откладке яиц (откладывают до 100 яиц каждая). Численность вредителя нарастает быстро и к началу цветения достигает максимума. С этого времени начинается миграция клещей. Скорость их перемещения достигает 5–8 см/ч при температуре от 4 до 12 °С и 10– 15 см/ч при 20 °С. Более высокие температуры ингибируют активность клещей. Они могут питаться и размножаться только внутри почек, на конусах нарастания. В дифференцированных почках, в пазухах развернувшихся листьев клещи погибают, так как не могут проникнуть сквозь многочисленные слои закрытых чешуй. Они внедряются в точки роста еще не защищенных чешуями молодых почек на верхушках побегов. После дифференциации такие почки становятся недоступными для фитофага. Достигает цели и приступает к размножению менее 1 % исходной мигрировавшей популяции клещей. Остальные погибают от голода, высыхания, хищников (клещи-фитосейиды, златоглазки, кокцинеллиды, личинки галлиц, журчалок).
Известно, что почковые клещи доступны действию пестицидов лишь в период их активной весенней миграции из отмирающих почек. Поэтому знание динамики этого процесса необходимо для организации опрыскиваний против этих фитофагов. Процесс миграции почковых клещей, в зависимости от погодных условий, может растягиваться до 3– 4 месяцев. Принято считать, что более 80 % клещей, заселяющих одну почку (численность клещей в почке при благоприятных условиях может достигать от 8–10 до 35000 особей), мигрируют на протяжении лишь 2– 3 недель (с начала цветения до завязывания ягод). В это время и происходит активное заселение почек. Хотя считается, что время массовой миграции приходится на период полного цветения смородины, однако, как показали наши исследования, фенологическое прогнозирование не всегда оправдывается. Миграция зависит, главным образом, от температуры воздуха и одновременно начинается на сортах с разными сроками созревания.
Наши многолетние наблюдения показали, что в годы с ранней, теплой и сухой весной (1994, 2000 и особенно 2002) миграция ускорялась, и к концу цветения в почках оставалось менее 20 % исходной популяции клещей. В годы с низкой весенней температурой и дождями (1997 и особенно 2004) массовая миграция C. ribis, наоборот, задерживалась, а если начиналась, то прекращалась из-за похолодания. Смородина отцветала, а основная часть популяции клещей все еще находилась во внутренних, а не наружных чешуях почек. Как показали сопоставления соотношения возрастных стадий C. ribis, замедлялись отрождение личинок из яиц, их линька в нимф, а затем во взрослые стадии. Нельзя упускать из виду и то, что в прохладную погоду замедляется и процесс «усыхания» прошлогодних галловых почек.
Таким образом, синхронизация развития паразита и его растения-хозяина может носить лишь относительный характер. В этом вопросе пока еще нет полной ясности. Кроме того, внедрение большого числа новых сортов черной смородины с разными сроками цветения–плодоношения или уровнями генетической устойчивости к C. ribis дополнительно осложняет прогнозирование.
По-видимому, для прогнозирования сроков миграции C. ribis следует подсчитывать сумму эффективных температур выше порога его развития (4 °С). Для миграции 5 % особей C. ribis требовалось 120– 140 градусодней, для 50 % – 316 градусодней. Миграция клещей происходит при высокой относительной влажности воздуха и только в светлые часы весенних суток (9:00–23:00). Высушивание убивает клещей, поэтому в комнатных условиях они погибают менее чем за 3 часа [3].
Как сказано выше, почки остаются доступными для внедрения почковых клещей, пока не дифференцируются с образованием колпачка из внутренних листьев. Поэтому по локализации галловых почек на побеге можно судить о соотношениях сроков миграции эриофиид и темпах активного роста побегов. Первые образовавшиеся почки могут избежать повреждения, позднее почки могут образовываться, когда основная миграция почковых клещей уже завершена.
Большое практическое значение имеет способность почковых клещей распространяться на большие расстояния не только с зараженным посадочным материалом, но и другими путями. Эта способность варьирует в различных условиях, что нашло свое отражение в противоречивых рекомендациях по пространственной изоляции вновь закладываемых насаждений смородины от существующих и заселенных клещами. В Польше признана достаточной изоляция на 50 м, в то время как на Алтае – 1,5–2 км [2, 8]. Наши многолетние наблюдения показывают, что на большие расстояния почковые клещи разносятся, прежде всего, ветром. Чтобы не допустить занос почковых клещей на плантацию со стороны, необходимо соблюдать требования пространственной изоляции посадок. При отсутствии помех на пути господствующих ветров (лесные насаждения, лесополосы, постройки и т.д.) пространственная изоляция между новосадками и старой плантацией должна составлять не менее 1 км. При наличии таких помех достаточно и 500 м. C. ribis, подобно иксодовым клещам – паразитам животных и переносчикам энцефалита – обладает способностью, изгибая тело, выпрыгивать с поверхности почек в воздух. Как подчеркивали Steinborn (1981), Herr (1989), в безветренную погоду, при 22 °С в воздух таким путем попадали 10 клещей за 0,5 часа, при скорости ветра 8 км/ч – 20–30, 15–24 км/ч – 80–100, 38,5 км/ч – 130–150 особей (с радиусом разноса до 5 км).
В ОПХ ВСТИСП мы наблюдали повреждение галловым почковым клещом маточника смородины на расстоянии около 1 км от сильно поврежденного индивидуального сада. При этом вредитель не был обнаружен на смородине в соседнем квартале, отделенном от маточника лесозащитной полосой.
Не менее важную роль в расселении почковых клещей играет явление форезии, или способность распространяться, прикрепившись к телу, например, более крупных насекомых (пчел и других опылителей, тлей, трипсов, клопов, цикадок, златоглазок, божьих коровок, мелких двукрылых, в том числе галлиц, пилильщиков, паразитических хальцид, браконид и др.). На одной особи тли Hyperomysus lactucae было обнаружено до 25 особей C. ribis [5, 6, 7].
Брызги дождя способствуют расселению почковых клещей в пределах уже заселенного ими куста или на соседние с ним растения. Почковые клещи могут распространяться по плантациям смородины режущими инструментами и, возможно, на руках, одежде и обуви работающих [8].
Для успешной борьбы с почковыми клещами не существует какого-то одного средства, с помощью которого можно было бы решать все проблемы. С токсикологической точки зрения не разрешено применение системных акарицидов и инсектоакарицидов на территории РФ, которые могли бы уничтожить фитофага внутри уже заселенных почек, где они дают до 5 поколений за год (3 – летнеосенних и 2 – весенних в средней полосе России). Хотя эти препараты могли бы найти свое применение до цветения культуры и в послеуборочный период, а на маточниках и в питомниках – без ограничения по времени.
Современные методы борьбы с почковыми клещами должны быть комплексными, только в этом случае обеспечивается высокая рентабельность производства, экологическая безопасность урожая, окружающей среды и сохранение полезной фауны – важнейшего компонента экосистем ягодных насаждений. Особое значение имеет закладка насаждений здоровым, сертифицированным посадочным материалом. Сразу после посадки (в насаждениях любых категорий) следует срезать на уровне почвы (без оставления пеньков) всю надземную часть саженцев. Это прием не только позволяет предупредить возникновение очагов почковых клещей, но и восстанавливает нарушенный баланс между корневой системой, которая повреждается в той или иной степени при выкопке, и надземными частями растений, значительно активизирует рост нулевых, более продуктивных побегов. В течение вегетации растения не цветут, тем самым не привлекают насекомых-опылителей, потенциальных активных переносчиков почковых клещей, становится возможным проведение профилактических защитных мероприятий пестицидами, в том числе разрешенными в питомниках и на маточниках, без ограничения по срокам.
Следует отметить, что контактные и кишечно-контактные препараты не в состоянии уничтожить клещей, находящихся внутри почек (кроме случаев погружения черенков в рабочие растворы соответствующих препаратов). Но при своевременном проведении профилактических обработок акарицидами и инсектоакарицидами, обладающими токсичностью по отношению к данным вредителям, достаточно успешно подавляются клещи, попадающие на растения со стороны (при контакте с ними вредитель погибает до внедрения в почку).
В последующие после срезки годы нужно проводить ежегодные осенние и весенние осмотры и фитосанитарную обрезку поврежденных почковыми клещами побегов и ветвей на уровне почвы. В питомниках и маточниках заселенные клещами кусты смородины и соседние с ними (с двух сторон) здоровые растения следует выкорчевать. Необходимо подчеркнуть, что в отличие от почковых клещей при системной зараженности растений махровостью, или реверсией, невозможно ликвидировать вирусную инфекцию с помощью срезки кустов. При отрастании побегов болезнь развивается далее, поэтому растения с симптомами реверсии нужно удалять.
На 6–8-й год посадки плодоносящих плантаций (в зависимости от фитосанитарного и агротехнического состояния насаждений) следует провести омолаживающую срезку всех растений на уровне почвы (без оставления пеньков), вывезти и уничтожить растительные остатки (маточники срезаются ежегодно и имеют ограничения по сроку эксплуатации). Это способствует полной ликвидации почковых клещей, накопившихся на посадке за годы эксплуатации. В год отрастания растений в течение вегетации проводят интенсивные защитно-профилактические мероприятия (особенно в период миграции почковых клещей). При нормальном агротехническом уходе и борьбе с сорной растительностью за один вегетационный сезон полностью восстанавливается надземная часть растений, состоящая только из нулевых высокопродуктивных побегов, закладываются плодовые почки, и на второй год после срезки растения обильно плодоносят, при этом значительно повышается урожайность и качество урожая (ягоды на однолетних ветвях гораздо крупнее).
Для профилактики и защиты плодоносящих насаждений в период миграции почковых клещей из препаратов, разрешенных для применения на территории РФ, непосредственно перед цветением и сразу после него можно использовать актеллик, кэ с нормой расхода 1,5 л/га, на небольших участках для ручных обработок – 15 мл/10 л воды; новактион, вэ – 1,3–3,4 л/га. После цветения и в дальнейшем, кроме указанных препаратов, можно применять биопрепараты фитоверм, кэ и акарин, кэ, оба с нормой расхода 1,2 л/га или 20 мл/10 л воды только в условиях сухой (без осадков) погоды, при температуре не ниже 20 °С. Химические препараты (актеллик и новактион) можно применять с интервалом в 10–15 дней, а биопрепараты (фитоверм и акарин) – с интервалом в 7–10 дней. Срок ожидания у вышеприведенных химических средств – 20 дней, биопестицидов – 2 дня. Препараты следует чередовать при обработках, один и тот же препарат не желательно использовать чаще 2 раз за сезон во избежание появления резистентности у вредителей.
В питомниках и на промышленных плантациях в год послепосадочной и омолаживающей срезки плодоносящих растений в период миграции почковых клещей наряду с приведенными выше препаратами можно применять Би-58 Новый, кэ в норме расхода 1,2–1,5 л/га или его аналоги; каратэ зеон, мкс, 0,3–0,4 л/га или его аналоги.
А.С. Зейналов
ведущий научный сотрудник Всероссийского селекционно-технологического института садоводства и питомниководства
e-mail: adzejnalov@yandex.ru
Журнал «Защита и карантин растений»
ЛИТЕРАТУРА
1. Савздарг Э.Э. Вредители ягодных культур. – М.: Сельхозгиз, 1960, 272 с.
2. Шаманская Л.Д. Смородинный почковый клещ в Сибири в кн. Агротехника и селекция садовых культур. – Новосибирск, 1983, с. 139–149.
3. Cross J.V. Emergence of black currant gall mite (Cecidophyopsis ribis) from galls in spring / J.P. Cross, M.S. Ridout // Journal for Horticulturae Science and Biotechnology, 2001, vol. 76, № 3, р. 311–319.
4. Fenton B. Molecular ecology of some Cecidophyopsis mites (Acarina: Eriophyidae) on Ribes species and evidence for their natural cross colonization of black currant (R. nigrum) // Annals of Applied Biology, 1996, vol. 128, № 3, р. 405–414.
5. Herr A. Untersuchungen zum Resistenzmechanismus der Gattung Ribes gegen die Johannisbeergallmillbe Cecidophyopsis ribis (Westw.) unter besonderer Berücksichtigung phenolischer Knospeninhaltstoffe. Diss. zur Erhangung des Grades Doktors des Naturwissenschaften, Institut Phytopathologie der Universitat Hohenheim, 1989, p. 146–221.
6. Larsson S. Gallkvalster. Cecidophyopsis ribis pa svarte vinbär // Växtförä dl. Frukt Bar-Balsgaard, 1982/1983 Uppsala, 1984, p. 116–124.
7. Steinborn H.A. Ausbreitung der Johannisbeergallmilbe (Cecidophyopsis ribis Westw.) auf Schwarzen Johannisbeeren (Ribes nigrum) // Erwerbsobstbau, 1981, № 23, p. 195–196.
8. Suski Z.W. Klopoty z wielkopakowcem porzeczkowym // Ogrodnictwo, 2000, R. 25, № 4, p. 46.
Аннотация.
Почковые клещи – опасные, скрытноживущие вредители ягодных кустарников (Rubus spp.). Паразитируют внутри почек, где за год могут дать до 5 поколений в условиях средней полосы России. Являются переносчиками вирусной реверсии на смородине. Повреждение почковыми клещами и поражение реверсией могут привести к бесплодию растений.
Abstract. Cecidophyopsis spp. are dangerous, reserved living wreckers of berry bushes (Rubus spp.). Parasitize in buds where for a year can give up to 5 generations in the conditions of a midland of Russia. Are carriers of reversion viruses on a currant. Damages by Cecidophyopsis spp. and defeats reversion virus can lead to barrenness of plants.
